目前国内针对ESD标本的病理学检查无统一规范性指南。我们参照WHO诊断标准、美国病理医生学会、欧洲、日本胃癌研究会有关胃癌标本病理学检查的指南，整理出我们对早期ESD标本规范化病理学检查的建议草案。ESD标本病理评估，除需要确定病变的病理类型外，更需要关注病变的切缘是否干净，浸润深度及有无脉管浸润等。

(一)标本预处理

1．冲洗：用生理盐水将标本表面的血液及黏液冲洗干净，充分暴露病变。

2.延展：沿着标本最外侧将蜷曲的标本展平后用不锈钢细针(推荐使用昆虫标本针或针灸针)固定于塑料泡沫或橡胶板上。若断端距离病变3 mm以内，禁止在此处钉针，以避免机械破坏影响对病变的观察。标明其在体内的相对位置(如口侧、肛侧、前壁、后壁等)]。

3.固定：标本放在平板上展平后，立即浸泡于10%的福尔马林溶液中固定，通常情况下，应在室温下浸泡12～48 h。固定液体积不少于标本体积的5倍。

(二)大体检查

1．照相、测量、描述、记录：拍摄大体照片至少两张(取材前全貌和取材切割图)。仔细观察标本，测量、记录组织信息，包括标本的大小、病变大小、形状、颜色、硬度、水平边缘、肉眼分型(巴黎分型)。

2.全面取材：确定切缘后，沿着病灶边缘至标本外侧缘最短距离的连线开始切片，然后平行于这条线连续切片，间隔为2.0～3.0 mm。

3.组织脱水、包埋：取材结束后将翻转好的组织条按顺序放入包埋盒，每盒≤3条，并记录放置顺序。组织脱水、浸蜡、石蜡包埋，切片厚度4～6 μm。

需描述肿瘤的大体形态、大小、病理组织学分型、分化程度、淋巴管和血管浸润、肿瘤浸润深度、黏膜状态和切缘情况以及有无脉管浸润，以确定内镜下切除是否达到完全切除或者是否还需要补充治疗，此外还需记录辅助检查结果，如免疫组织化学HER2蛋白等的表达状态，利用免疫组化确定少见组织类型，如神经内分泌癌等。

显微镜下需观察内容：

1．有无溃疡及周围黏膜：溃疡及瘢痕影响ESD手术及对预后的判断。周围黏膜的非肿瘤性改变(包括炎性反应、萎缩、化生等改变)。

2．组织来源和分型标准：有无上皮内瘤变，不确定的上皮内瘤变，低级别上皮内瘤变，高级别上皮内瘤变(原位癌可疑浸润癌，黏膜内浸润癌)，黏膜下浸润癌(日本和西方标准不同)。

3．组织学类型及分化程度：多种组织病理学类型同时存在时，应记录每种类型并按照其对应面积大小以降序排列。

4．肿瘤浸润深度：肿瘤的浸润深度应该以病灶浸润的最深层记录。若肿瘤浸润至黏膜下层，需要测量病灶最深处至黏膜肌层(可通过免疫组化Desmin协助显示)下缘距离。胃肠道不同部位肿瘤对于SM1的界定标准不同，胃<500 μm，超过以上深度则为SM2。若病灶因为溃疡或溃疡瘢痕而使黏膜肌层不易辨认，可通过画一条虚线连接临近残存黏膜肌层假想为完整之黏膜肌层，再通过测定肿瘤下缘至该线的距离来记录黏膜下肿瘤浸润深度。

5．切缘状态：切缘干净是指在切除组织的各个水平及垂直切缘未见到肿瘤细胞。切缘阴性：若肿瘤距切缘较近，则应记录癌灶距切缘的最近距离。水平切缘阳性：记录阳性切缘块数。垂直切缘阳性：记录肿瘤所在部位。

6．脉管浸润：可借助特殊染色和免疫组化。亚甲蓝和苏木精-伊红(HE)双重染色以及弹力纤维染色的免疫组化检查可用于识别静脉，而抗淋巴管内皮抗体(D2-40)则用于淋巴管的识别。VG染色和CD31或CD34免疫组化染色也广泛用于血管和淋巴管浸润的鉴定。

图1 测量大小；图2 ESD标本病变全貌图 注：虚线为病灶边缘距离水平切缘(外侧缘)最近处的切线，“4”号实线为第一次切片的切线，需垂直于虚线；通过固定标本的拍照，可以重建肿瘤侵犯深度(黑色代表黏膜层累及，红色代表黏膜下层累及)和在黏膜内扩散的范围，“1”～“8”为标本的切线；图3A  ESD标本固定后的处理和对于肿瘤扩散程度的重建示意图；3B  ESD　标本取材；图4 HE染色